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该研究以题为“Expansion and CAR engineering of granulocyte-monocyte progenitors for cellular immunotherapy”发表在Cell上。
生物纳米前沿
工程巨噬细胞在肿瘤免疫治疗方面前景看好,但受限于体外扩增、遗传易治性及移植后生物分布。我们开发了定义的培养条件,使小鼠和人类颗粒单核细胞前体(GMPs)能够长期扩增,同时保持祖细胞身份和髓系潜力,确立了GMPs作为可再生工程平台的地位。从机制上看,我们将髓过氧化物酶识别为GMP增殖的调控因子。扩展的GMP易于工程化,转移后可播种造血生态位,产生供体衍生的骨髓生成,恢复慢性肉芽肿小鼠的抗菌防御,并产生丰富的肿瘤浸润巨噬细胞。用嵌合抗原受体(CAR)设计的GMPs抑制CD19阳性白血病和人类表皮生长因子受体2(HER2)阳性实体肿瘤。我们进一步引入了一种包含免疫球蛋白G(IgG)Fc结构域的CAR,该结构域招募宿主Fc受体表达吞噬细胞,实现主要组织相容性复合体(MHC)不匹配的T细胞引发,并提升免疫功能正常的异体癌症模型中的疗效。这些发现共同确立了可扩展的GMPs作为工程免疫治疗的可扩展平台。

图1
mGMPs的长期扩展与表征区域以蓝色标出。
图2
(A)在指定条件下培养的分选脐带血(CB)细胞(CD34CD38CD45RA)的生长曲线。细胞每3天传代一次,1×10天重新染色+++5每孔单元(48孔格式)。数据均值±三个独立实验的标准差。改良SCF/2i:SCF + GDC + TN2-30。(B) 单一hGMP在SCF/2i-IG中展开的顺序图像。在156个单独评分的hGMPs中,51个(32.7%)形成了未分化的群体。(C) 以最高细胞类型特异性基因表达评分标注的scRNA-seq序列t-SNE投影。(D) 显示scRNA-seq数据中培养时长注释的热图。富含CD34的人类CB、动员外周血(MB)和全大便细胞在SCF/2i-IG中扩增27天。(E)显示SCF/2i-IG扩展期间主要GMP身份的单元类型特征浓缩雷达图。(F)通过免疫荧光和流式细胞术评估CD68和CD14的扩展hGMPs的巨噬细胞分化。流式细胞术数据为三个独立实验的平均值±标准差。(G) 通过Giemsa染色(上方)和流式细胞术(下)使用所示颗粒细胞标记评估扩充hGMPs的颗粒细胞分化。流式细胞术数据为三个独立实验的平均值±标准差。
图3
(A) CD19 B-ALL 异种移植模型中αCD19 CAR-hGMP治疗的实验示意图(时间线如下所示)。+(B)在指定时间点对外周血白细胞中GFP B-ALL细胞进行流式细胞术定量。+(C)针对(A)小鼠的Kaplan-Meier生存分析。(D) SKOV3-GFP细胞共培养后1小时的代表性图像(5×10)5每孔)与αHER2 CAR-RFP hGMP来源巨噬细胞(1 × 105“per well”)。2小时吞噬作用的流式细胞术定量(平均值±标准差;n = 来自三个独立实验的6个样本)。(E)携带皮下SKOV3-Fluc肿瘤的NSG小鼠体内双荧光素酶成像(5 × 106细胞;n = 4)。αHER2 CAR-Nluc hGMPs(1 × 107)于第7天静脉输注。荧光素给药后第20天拍摄了fluc图像。Nluc影像是在输注后第21天(输注后14天)给药后拍摄的。(F) 使用抗人类CD68(红色)并于指定终点处使用DAPI(蓝色)对抗染色,对(E)小鼠肿瘤、脾脏和肝脏进行免疫组化。对照图像显示未处理hGMPs的携带SKOV3 NSG小鼠染色。(G) SKOV3异种移植疗效研究中αHER2 CAR-hGMP治疗的实验示意图。(H) 接种SKOV3-Fuc细胞并用αHER2 CAR-RFP hGMPs或PBS处理的NSG小鼠肿瘤负荷随时间变化的代表性生物发光图像(1 × 107细胞;n = 每组8只小鼠)。(I)通过肿瘤区域的综合Fluc发光量化(H)肿瘤负荷。(J) (H) 小鼠的Kaplan-Meier生存分析。
图4
CAR-Fc增强异体抗肿瘤反应(A) 将IgG1 Fc结构域(及连接体)纳入CAR细胞外区域的CAR-Fc设计示意图,如所示。(B)混合株共培养示意图。工程化的BALB/c基因GMP衍生巨噬细胞与野生型(WT)C57BL/6巨噬细胞和OT-II CD4 T细胞,以及表达hHER2和OVA的Py230肿瘤细胞共同培养+323–339肽。OT-II激活需要OVA323–339在C57BL/6宿主吞噬细胞获得抗原后呈报于C57BL/6 MHC II类。(C)通过工程BALB/c巨噬细胞进行顺式吞噬的流式定量,以及WT C57BL/6巨噬细胞对反式吞噬作用的定量。(D)OT-II T细胞在共培养条件下增殖的代表性图像。(E)通过流式细胞术定量OT-II T细胞的CFSE稀释。(F)共培养上清液(干扰素γ[IFN-γ]和IL-2,如所示)中的细胞因子水平。(G)同基因A20传播淋巴瘤模型实验示意图,采用异体供体GMP转移(如图所示供受体株错配)。(H)通过发光法量化荧光素表达A20细胞的淋巴瘤负荷(p值:CAR与Null < 0.0001,CAR-Fc与Null < 0.0001,CAR-Fc vs. CAR = 0.008)。(I) 对(G)小鼠的Kaplan-Meier生存分析(p值:CAR与Null = 0.033,CAR-Fc与Null = 0.002,CAR-Fc vs. CAR = 0.007)。(J) 同基因hHER2 4T1肿瘤模型实验示意图,采用异基因供体GMP移植(供体-受体株差配,如注明所示)。+(K) 代表性肿瘤切片图像,显示第9、11和12天RFP供体GMP来源细胞的F4/80染色。+(L) 定量在第9、11和12天时RFP供体细胞中F4/80的比例。++(M)代表性肿瘤切片图像,显示CD3和Granzyme B(GZB)染色。
参考信息
Cell(IF 45.1)
Pub Date : 2026-06-19DOI: 10.1016/j.cell.2026.05.043
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